ГЛАВА 4. РЕЗУЛЬТАТЫ ЭКСПЕРИМЕНТОВ НА ЖИВОТНЫХ

Для проведения внутрибрюшинной химиогипертермической перфузии у лабораторных животных в группе I и II использовалась установка на основе роликового насоса и водяной термостатирующей бани, а в группе III впервые применяли минимальный экстракорпоральный контур и лазерный излучатель для достижения гипертермии в брюшной полости (Рис.

(1)

Рис. 15. Схема экспериментальной установки для проведения внутрибрюшинной химиогипертермической перфузии по отработанной методике (1) и внутрибрюшинная химиогипертермическая перфузия c применением минимального экстракорпорального контура (2).

Перед проведением химиоперфузии магистрали перфузионной системы стерилизовались раствором первомура в течение 20 минут, после чего раствор первомура сливали и промывали магистрали стерильным

физиологическим раствором в течение 20 минут.

Перед операцией крысе для обезболивания вводили кетопрофен подкожно в дозе 5 мг/кг, через 10 минут - тиопентал натрия

внутрибрюшинно в дозе 60 мг/кг для введения в наркоз, 10 мл

физиологического раствора подкожно для предотвращения дегидратации. Через 2 минуты после введения препаратов крысу помещали на грелку для предотвращения гипотермии. Кожа живота крыс освобождалась от шерсти и дезинфицировалась 5% спиртовым раствором йода. У крыс групп I и III выполняли два небольших (0,8-1 см) разреза через кожу и брюшную стенку: один - в области правого подреберья, второй - в левой подвздошной области. Катетер для притока перфузата и термометр для измерения

внутрибрюшинной температуры помещали в брюшную полость через первый разрез, катетер для оттока перфузата - через второй разрез.

Магистрали перфузионной системы заполняли стерильным физиологическим раствором объемом 200 мл, в котором предварительно растворяли цисплатин в дозе 4 мг/кг массы тела животного. У крыс группы I и II нагнетание раствора в брюшную полость осуществлялось при помощи роликового перфузионного насоса. По приточной магистрали (со скоростью 10-15 мл/мин.) раствор из резервуара поступал в термостатирующую водяную баню, где он нагревался до температуры 44,5-45,5°С и далее поступал в брюшную полость. У лабораторных животных группы III ВХГП проводилась на основе минимального экстракорпорального: раствор нагнетался в брюшную полость с помощью лабораторного перистальтического насоса (со скоростью 10-15 мл/мин). Гипертермия в брюшной полости в этом случае создавалась за счет лазерного излучателя, который устанавливался на высоте 25 см над брюшной полостью крысы. Интенсивность излучения составляла 810 нм.

Рис. 16. Открытая внутрибрюшинная химиогипертермическая перфузия

Температура брюшной полости и ректальная температура крыс на протяжении перфузии контролировались с помощью цифровых термометров, а функция сердца (ЭКГ, частота сердечных сокращений) и частота дыхания - с помощью электродных датчиков универсального кибернетического комплекса регистрации и анализа параметров витальных функций. ВХГП во всех группах длилась 45 минут. На 5-ой, 15-ой, 25-ой, 35-ой и 45-ой минутах производили регистрацию указанных выше показателей.

при закрытой ВХГП (группы I и III) c этой целью каждые 5 минут на протяжении перфузии меняли положение тела животного в пространстве в течение 1 минуты.

По окончании перфузии раствор цитостатика удаляли из брюшной полости, а магистрали перфузионной системы заполняли стерильным физиологическим раствором объемом 200 мл и проводили промывку брюшной полости в течение 20 минут. По окончании промывки брюшная стенка зашивалась в 2 слоя с использованием рассасывающегося шовного материала для апоневроза и нерассасывающегося шовного материала для кожи. Области наложения швов обрабатывали 5% спиртовым раствором йода, накладывали асептическую повязку. Непосредственно после операции и через 24 часа крысам вводили цефтриаксон внутримышечно в дозе 93 мг/кг, 10 мл физиологического раствора подкожно.

4.1.